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诚信经营质量保障价格合理服务贴心有些电转实验最让人头疼的地方,并不是第一次失败。
而是已经做了五次、十次,甚至更长时间,结果依然不稳定。
一会儿效率30%,一会儿60%,偶尔达到70%,下一次又突然掉下来。
遇到这种情况继续不停修改参数,往往只会让实验变得更加混乱。
如果你正在搜索“电转效率低怎么办",而且已经尝试过很多参数,可以考虑暂停继续试错,从头按照完整实验链路重新梳理一次。
不要一开始就挑战最困难的样品。
如果实验条件允许,可以先使用相对成熟的细胞体系或者已有成功方案验证设备、电转杯和基本操作流程是否正常。
如果标准条件能够稳定获得结果,那么后续重点就应该转移到当前目标细胞和样品。
反之,如果连成熟体系都出现明显波动,就应该先排查设备、耗材和操作流程。
这种方法能够避免把所有问题都归因到“细胞太难转"。
正式优化以前,尽量使用状态接近的细胞。
包括接近的培养时间、细胞密度、代次和处理方式。
如果今天使用状态非常好的细胞,明天使用已经过度生长的细胞,两组数据其实并不适合直接比较。
尤其是原代细胞、干细胞和免疫细胞,对培养条件变化可能更加敏感。
如果细胞质量本身波动很大,就很难从电参数变化中得到可靠结论。
确认DNA、RNA、蛋白或者其他递送物的浓度、纯度以及加入量。
如果不同实验使用的核酸批次不同,可以考虑先统一样品来源进行一轮参数筛选。
这样做的目的不是追求一次高效率,而是减少变量。
科学的参数优化,本质上就是不断减少不确定因素。
不要因为效率低,就直接使用非常强的电脉冲。
建议先在细胞能够保持较高活率的条件附近开始,再逐步增强刺激。
如果发现电压升高以后转染效率持续增加,而活率仍然保持良好,可以继续优化。
当活率开始快速下降时,就应该开始谨慎。
很多情况下,真正的最佳条件就在这个转折点附近。第五阶段:分别优化波形相关参数
如果使用方波电穿孔,需要综合考虑电压、脉冲宽度、次数和间隔。
如果使用指数衰减波,则不能只关注峰值电压,还应该关注整个电脉冲衰减过程以及时间常数。
不同细胞和不同递送物对波形的响应并不一样。
所以不存在一组能够适用于所有实验的万能参数。
这也是为什么网上看到的电转参数只能作为参考,而不能直接照搬。
很多人把电转仪提示“完成"当成实验结束。
实际上,这个时候只是完成了物质递送步骤。
细胞膜恢复、细胞应激修复和后续培养同样决定最终结果。
建议保证不同实验组采用相同恢复时间、相同培养条件以及相同检测时间。
否则电转阶段一致,后面的差异仍然可能导致最终效率出现明显变化。
如果已经排除了细胞、样品和操作问题,但仍然无法获得稳定结果,就需要进一步检查设备。
例如当前实验是否需要更宽的电压调节范围?
是否需要更精细的脉冲时间设置?
是否需要方波与指数衰减波进行比较?
是否需要保存不同细胞程序?
不同批次输出是否稳定?
设备的价值并不是单纯“能够放电",而是能否帮助实验人员把复杂条件变成可以控制、可以重复、可以记录的参数体系。
对于长期开展细胞转染、基因编辑、微生物转化或者原代细胞实验的实验室来说,这一点尤其重要。
最后,再回到最开始的问题:
电转效率低怎么办?
不要急着找一个所谓的“最佳参数"。
先确认细胞有没有问题,再确认样品,然后确认电转体系,再优化电脉冲,最后观察恢复和检测条件。
如果每一个环节都被量化、记录并固定下来,电转实验就会逐渐从“靠经验试"变成“根据数据优化"。
而对于科研实验来说,能够重复获得60%的稳定结果,很多时候比偶尔获得一次90%的结果更有实际价值。